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一张标准 WB 图通常包含
1、蛋白 Marker(分子量标准):显示条带对应的 kDa 值,用于判断目的蛋白分子量;
2、样品泳道:对照组、处理组(如药物、转染、时间梯度等),常做生物学重复;
3、目的蛋白条带:特异性结合抗体显示的条带;
4、内参蛋白条带(如 GAPDH、β-actin、α-tubulin):用于校正上样量差异;
5、标注:分组名称、kDa 标尺、抗体名称、曝光条件;
6、原始全膜图 + 裁剪图(论文要求,防止数据造假)。
典型实验图示例
1、常规化学发光 WB 图(灰度图,最常见)
(1)左列为蛋白 Marker;中间为目的蛋白(如 p-ERK1/2);右侧为内参 GAPDH;泳道依次为 Control、Drug1、Drug2、Drug3 组,每组 3 个重复。
2、多靶标同膜检测
(1)同一膜剥离后,分别孵育不同一抗,检测多种相关蛋白(如 ERK1/2、p-ERK1/2、β-actin)。
3、异常条带示例(常见问题)
(1)非特异性条带:多条杂带;
(2)条带弯曲 / 拖尾:上样过多、凝胶不均、电泳条件不当;
(3)背景过高:封闭不足、抗体浓度过高。
图的解读与定量步骤
1、定性:判断目的蛋白是否表达(有条带 / 无条带);条带位置是否符合预期分子量;
2、半定量(核心):
(1)用 ImageJ、Image Lab 等软件测量目的条带与内参条带的灰度值;
(2)计算每组目的 / 内参比值;
(3)以对照组为 1,计算相对表达量,绘制柱状图;
(4)统计学分析:多组重复数据做 t 检验或方差分析。
论文中 WB 图的规范要求
1、必须提供 完整未裁剪的原始膜图(supplementary data);
2、裁剪图需保持条带比例一致,不拉伸、不随意调对比度掩盖背景;
3、标注清晰:Marker 分子量、组名、重复数、抗体信息;
4、定量结果需附柱状图,标注误差线(SD/SEM)和统计学显著性(*p<0.05, *p<0.01)。
常见问题与优化
问题 | 原因 | 解决方法 |
无条带 | 蛋白未转膜、抗体不匹配、检测系统失效 | 优化转膜条件(时间 / 电压),验证抗体特异性,更换发光底物 |
背景高 | 封闭不充分、抗体浓度过高 | 延长封闭时间(5% 脱脂奶 / TBST,室温 1-2h),降低一抗浓度 |
条带模糊 | 凝胶聚合不均、上样量过大 | 严格控制 APS 和 TEMED 用量,减少上样量 |
实验图的保存与处理
1、用成像系统(如 Bio-Rad ChemiDoc)保存 原始 .tiff 格式文件(不可压缩,保留灰度信息);
2、仅做统一的亮度 / 对比度调整,严禁局部涂抹、删除条带;
3、分组整理文件夹,标注日期、样品编号、抗体批号、曝光时间。
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